在实验室日常分析工作中，洗涤仪器、溶解样品及配置溶液均需用水。一般天然水和自来水(生活饮用水)中常含有氯化物、碳酸盐、硫酸盐以及泥沙等少量无机物和有机物，影响分析结果的准确度[1-3]。作为分析用水，必须先经一定的方法净化，达到国家规定的相应级别实验室用水规格后，方可使用[4]。作为医院的检验科室，其出示的报告结果质量直接影响到临床的诊断和治疗。为此，本研究对实验室纯水进行水质分析。

1 材料和方法

1.1 设备与材料

(1)仪器。pH计(S220，梅特勒)；紫外分光光度计(UV-3600，岛津)；电导率仪(DDSJ-318，雷磁)，蒸发残渣测定仪(ZF800A，标际)。

(2)试剂。均购于国药集团，为分析纯。

(3)水样。纯化前水样取自本院供水中心(经两级纯水设备制备)；纯化后水样，经实验室纯水设备再纯制。

1.2 实验方法

参照国家标准GB/T 6682-2008“实验室用水规格和试验方法”[5]；每个试验至少重复3次。

1.3 pH值与电导率

(1)参照国家标准GB/T 9724-2007“化学试剂pH值测定通则”的规定进行测定[6]。使用pH计，以pH值为5.0～8.0的标准溶液校正pH值，然后将100ml纯水注入烧杯中，插入电极，按照说明书规定的操作步骤操作，测出水样的pH值。

(2)采用电导率仪(DDSJ-318)，选用配备电极参数为0.01～0.1 cm-1的电导池，并具有温度自动补偿功能。按照电导率仪说明书进行测量。

1.4 可氧化物质

(1)制剂的制备。配置20%硫酸溶液，0.01 mol/L高锰酸钾标准滴定溶液[7-8]。

(2)测定步骤。量取1000 ml纯化后水样，注入烧杯中，加入5 ml硫酸溶液(20%)，混匀。量取200 ml纯化前水样，注入烧杯中，加入1 ml硫酸溶液(20%)混匀。在上述已酸化的试液中分别加入1 ml高锰酸钾标准滴定溶液[(C1/5KMnO4)=0.01mol/L]混匀，盖上表面皿，加热至沸腾并保持5min。

1.5 吸光度与蒸发残渣

采用紫外分光光度计，按照国家标准GB/T9721-2006“化学试剂分子吸收分光光度法通则“紫外和可见光部分”的规定测定[9]。

量取1000 ml纯化后水样、纯化前水样500ml，分别将水样分数次加入旋转蒸发器的蒸馏瓶中，于水浴上减压蒸发。待水样最后蒸发至约50 ml时，停止加热。将上述预浓集的水样，转移至一个已于(105±2)℃恒量的蒸发皿中，并用5～10 ml水样分2～3次冲洗蒸馏瓶，将洗液与预浓集水样合并与蒸发皿中，采用蒸发残渣测定仪(ZF800A)，按照国家标准GB/T 9740-2008化学试剂蒸发残渣测定通用方法的规定进行测定[10]。

1.6 可溶性硅

1.6.1 制剂的准备

分别配置0.01 mg/ml，1 mg/ml的二氧化硅标准溶液；50 g/l钼酸铵溶液；2 g/l对甲氨基酚硫酸盐溶液；50 g/l草酸溶液。

1.6.2 测定步骤

量取520 ml纯化后水样、纯化前水样270 ml，分别注入铂皿中，亚沸蒸发至约20 ml，停止加热，冷却至室温，加1ml钼酸铵溶液(50 g/l)，摇匀，放置5 min后，加1ml草酸溶液(50 g/l)，摇匀，放置1 min后，加1 ml对甲氨基酚硫酸盐溶液(2g/l)，摇匀。移入比色管中，稀释至25ml，摇匀，于60℃水浴中保温10min。溶液所呈蓝色不得深于标准比色液。标准比色液的制备是量取0.5ml二氧化硅标准溶液(0.01mg/ml)，用水稀释至20ml后，标准比色液与检测的一级水和二级水同时采用同样的方法处理。

1.7 统计学方法

采用SPSS 21.0统计分析软件进行数据处理。计量资料以均值±标准差(x-±s)表示，组间差异分析采用配对t检验，以P＜0.05为差异有统计学意义。

2 结果

实验室净化前的纯水pH值为7.4±0.1，电导率为(0.07±0.01)mS/m，可氧化物质含量为(0.07±0.02)mg/L，吸光度值为0.008±0.001，蒸发残渣含量为(0.8±0.15)mg/L，可溶性硅含量为(0.015±0.003)mg/L；而经设备纯化后的纯水pH值为7.18±0.02，电导率为(0.006±0.001)mS/m，可氧化物质含量为(0.06±0.03)mg/L，吸光度值为0.001±0.000，蒸发残渣含量为(0.6±0.08)mg/L，可溶性硅含量为0.01±0.001。净化前后除可氧化物质含量外，pH值、电导率、吸光度、蒸发残渣含量及可溶性硅含量进行统计学分析比较，差异有统计学意义(t=12.225，t=12.113，t=4.763，t=6.864，t=4.402；P＜0.05)，可满足医用实验室的要求，见表1。

3 讨论

在本研究中，试验用纯水应用于西门子BN™ II全自动蛋白分析仪和迈瑞BS380全自动生化分析仪检验分析、试剂配液及容器清洗等，清洗反应杯及吸针。若纯水质量不合要求，清洗过程水中杂质将留在反应杯及吸针上，造成交叉污染[11-12]。纯水设备采用先进的反渗透技术和离子交换等技术相结合的方式，微电脑单板机程序控制，水质检测自动显示，从而获得了高质量的产出水[13-14]。

纯水作为医院实验室用量最大的试剂，是许多物质进行化学反应和能量交换的必要介质。水的纯度是否合格将直接影响测量结果的可靠性，影响到临床的诊断和治疗[15]。因此，必须对纯水质量引起高度重视，应意识到纯水质量是获得其他检测准确结果的首要条件；并应注意更新设备[16]。许多实验室纯水设备陈旧老化，所产纯水不能满足标准要求，必须更新设备或改造程序。此外，要加强制备、购进纯水过程中运输、保存与使用的监控[17-18]；如使用高压聚乙烯容器贮存电导率0.08 μs/cm的纯水，两周后电导率会上升到0.1 μs/cm。纯水器等实验室纯水系统的使用寿命与水质、日常维护有着紧密的联系，水质差、日常不注意清洗维护会加重缩短纯水器的使用期[18]。在纯水器的水箱及RO膜表面极易产生菌膜，菌膜会使纯水器的运转出现问题，如造成滤膜阻塞、内压升高、系统漏水及增压泵损坏；菌膜也造成离子交换树脂无法正常工作；菌膜还会阻塞RO膜，使其无法正常工作。应定期消毒RO膜，定期清洗水箱，及时更换耗材，避免菌膜的产生并使纯水器达到最佳状态，保持实验结果在无污染背景下的高一致性，为临床的诊断和治疗提供准确的数据支持。

4 结语

参照国家标准GB/T 6682-2008“分析实验室用水规格和试验方法”，分别从pH值、电导率、可氧化物质、吸光度、蒸发残渣和可溶性硅的含量6个指标探索分析实验室纯水在纯化前后的水质。结果表明，实验室纯水净化前符合二级水质标准；而经设备纯化后的纯水符合一级水质标准，实验室纯水净化后水质得到显著提高，能够满足医用实验室的要求。,在实验室日常分析工作中，洗涤仪器、溶解样品及配置溶液均需用水。一般天然水和自来水(生活饮用水)中常含有氯化物、碳酸盐、硫酸盐以及泥沙等少量无机物和有机物，影响分析结果的准确度[1-3]。作为分析用水，必须先经一定的方法净化，达到国家规定的相应级别实验室用水规格后，方可使用[4]。作为医院的检验科室，其出示的报告结果质量直接影响到临床的诊断和治疗。为此，本研究对实验室纯水进行水质分析。

1 材料和方法

1.1 设备与材料

(1)仪器。pH计(S220，梅特勒)；紫外分光光度计(UV-3600，岛津)；电导率仪(DDSJ-318，雷磁)，蒸发残渣测定仪(ZF800A，标际)。

(2)试剂。均购于国药集团，为分析纯。

(3)水样。纯化前水样取自本院供水中心(经两级纯水设备制备)；纯化后水样，经实验室纯水设备再纯制。

1.2 实验方法

参照国家标准GB/T 6682-2008“实验室用水规格和试验方法”[5]；每个试验至少重复3次。

1.3 pH值与电导率

(1)参照国家标准GB/T 9724-2007“化学试剂pH值测定通则”的规定进行测定[6]。使用pH计，以pH值为5.0～8.0的标准溶液校正pH值，然后将100ml纯水注入烧杯中，插入电极，按照说明书规定的操作步骤操作，测出水样的pH值。

(2)采用电导率仪(DDSJ-318)，选用配备电极参数为0.01～0.1 cm-1的电导池，并具有温度自动补偿功能。按照电导率仪说明书进行测量。

1.4 可氧化物质

(1)制剂的制备。配置20%硫酸溶液，0.01 mol/L高锰酸钾标准滴定溶液[7-8]。

(2)测定步骤。量取1000 ml纯化后水样，注入烧杯中，加入5 ml硫酸溶液(20%)，混匀。量取200 ml纯化前水样，注入烧杯中，加入1 ml硫酸溶液(20%)混匀。在上述已酸化的试液中分别加入1 ml高锰酸钾标准滴定溶液[(C1/5KMnO4)=0.01mol/L]混匀，盖上表面皿，加热至沸腾并保持5min。

1.5 吸光度与蒸发残渣

采用紫外分光光度计，按照国家标准GB/T9721-2006“化学试剂分子吸收分光光度法通则“紫外和可见光部分”的规定测定[9]。

量取1000 ml纯化后水样、纯化前水样500ml，分别将水样分数次加入旋转蒸发器的蒸馏瓶中，于水浴上减压蒸发。待水样最后蒸发至约50 ml时，停止加热。将上述预浓集的水样，转移至一个已于(105±2)℃恒量的蒸发皿中，并用5～10 ml水样分2～3次冲洗蒸馏瓶，将洗液与预浓集水样合并与蒸发皿中，采用蒸发残渣测定仪(ZF800A)，按照国家标准GB/T 9740-2008化学试剂蒸发残渣测定通用方法的规定进行测定[10]。

1.6 可溶性硅

1.6.1 制剂的准备

分别配置0.01 mg/ml，1 mg/ml的二氧化硅标准溶液；50 g/l钼酸铵溶液；2 g/l对甲氨基酚硫酸盐溶液；50 g/l草酸溶液。

1.6.2 测定步骤

量取520 ml纯化后水样、纯化前水样270 ml，分别注入铂皿中，亚沸蒸发至约20 ml，停止加热，冷却至室温，加1ml钼酸铵溶液(50 g/l)，摇匀，放置5 min后，加1ml草酸溶液(50 g/l)，摇匀，放置1 min后，加1 ml对甲氨基酚硫酸盐溶液(2g/l)，摇匀。移入比色管中，稀释至25ml，摇匀，于60℃水浴中保温10min。溶液所呈蓝色不得深于标准比色液。标准比色液的制备是量取0.5ml二氧化硅标准溶液(0.01mg/ml)，用水稀释至20ml后，标准比色液与检测的一级水和二级水同时采用同样的方法处理。

1.7 统计学方法

采用SPSS 21.0统计分析软件进行数据处理。计量资料以均值±标准差(x-±s)表示，组间差异分析采用配对t检验，以P＜0.05为差异有统计学意义。

2 结果

实验室净化前的纯水pH值为7.4±0.1，电导率为(0.07±0.01)mS/m，可氧化物质含量为(0.07±0.02)mg/L，吸光度值为0.008±0.001，蒸发残渣含量为(0.8±0.15)mg/L，可溶性硅含量为(0.015±0.003)mg/L；而经设备纯化后的纯水pH值为7.18±0.02，电导率为(0.006±0.001)mS/m，可氧化物质含量为(0.06±0.03)mg/L，吸光度值为0.001±0.000，蒸发残渣含量为(0.6±0.08)mg/L，可溶性硅含量为0.01±0.001。净化前后除可氧化物质含量外，pH值、电导率、吸光度、蒸发残渣含量及可溶性硅含量进行统计学分析比较，差异有统计学意义(t=12.225，t=12.113，t=4.763，t=6.864，t=4.402；P＜0.05)，可满足医用实验室的要求，见表1。

3 讨论

在本研究中，试验用纯水应用于西门子BN™ II全自动蛋白分析仪和迈瑞BS380全自动生化分析仪检验分析、试剂配液及容器清洗等，清洗反应杯及吸针。若纯水质量不合要求，清洗过程水中杂质将留在反应杯及吸针上，造成交叉污染[11-12]。纯水设备采用先进的反渗透技术和离子交换等技术相结合的方式，微电脑单板机程序控制，水质检测自动显示，从而获得了高质量的产出水[13-14]。

纯水作为医院实验室用量最大的试剂，是许多物质进行化学反应和能量交换的必要介质。水的纯度是否合格将直接影响测量结果的可靠性，影响到临床的诊断和治疗[15]。因此，必须对纯水质量引起高度重视，应意识到纯水质量是获得其他检测准确结果的首要条件；并应注意更新设备[16]。许多实验室纯水设备陈旧老化，所产纯水不能满足标准要求，必须更新设备或改造程序。此外，要加强制备、购进纯水过程中运输、保存与使用的监控[17-18]；如使用高压聚乙烯容器贮存电导率0.08 μs/cm的纯水，两周后电导率会上升到0.1 μs/cm。纯水器等实验室纯水系统的使用寿命与水质、日常维护有着紧密的联系，水质差、日常不注意清洗维护会加重缩短纯水器的使用期[18]。在纯水器的水箱及RO膜表面极易产生菌膜，菌膜会使纯水器的运转出现问题，如造成滤膜阻塞、内压升高、系统漏水及增压泵损坏；菌膜也造成离子交换树脂无法正常工作；菌膜还会阻塞RO膜，使其无法正常工作。应定期消毒RO膜，定期清洗水箱，及时更换耗材，避免菌膜的产生并使纯水器达到最佳状态，保持实验结果在无污染背景下的高一致性，为临床的诊断和治疗提供准确的数据支持。

4 结语

参照国家标准GB/T 6682-2008“分析实验室用水规格和试验方法”，分别从pH值、电导率、可氧化物质、吸光度、蒸发残渣和可溶性硅的含量6个指标探索分析实验室纯水在纯化前后的水质。结果表明，实验室纯水净化前符合二级水质标准；而经设备纯化后的纯水符合一级水质标准，实验室纯水净化后水质得到显著提高，能够满足医用实验室的要求。