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医用实验室纯水水质分析

[导读]分析医学实验室用水净化前、后的水质纯度。方法:参照国家标准GB/T 66822008“分析实验室用水规格和试验方法”,分别从pH值、电导率、可氧化物质、吸光度、蒸发 残渣和可溶性硅的含量6个指标检测分析。

在实验室日常分析工作中,洗涤仪器、溶解样品 及配置溶液均需用水。一般天然水和自来水(生活饮用 水)中常含有氯化物、碳酸盐、硫酸盐以及泥沙等少量 无机物和有机物,影响分析结果的准确度[1-3]。作为分 析用水,必须先经一定的方法净化,达到国家规定的 相应级别实验室用水规格后,方可使用[4]。作为医院 的检验科室,其出示的报告结果质量直接影响到临床 的诊断和治疗。为此,本研究对实验室纯水进行水质 分析。 

1  材料和方法 

1.1 设备与材料 (1)仪器。pH计(S220,梅特勒);紫外分光光度计 (UV-3600,岛津);电导率仪(DDSJ-318,雷磁),蒸发 残渣测定仪(ZF800A,标际)。 (2)试剂。均购于国药集团,为分析纯。 (3)水样。纯化前水样取自本院供水中心(经两级纯 水设备制备);纯化后水样,经实验室纯水设备再纯制。 

1.2 实验方法 参照国家标准GB/T 6682-2008“实验室用水规

格和试验方法”[5];每个试验至少重复3次。 

1.3 pH值与电导率 (1)参照国家标准GB/T 9724-2007“化学试剂 pH值测定通则”的规定进行测定[6]。使用pH计,以 pH值为5.0~8.0的标准溶液校正pH值,然后将100 ml纯水注入烧杯中,插入电极,按照说明书规定的操 作步骤操作,测出水样的pH值。 (2)采用电导率仪(DDSJ-318),选用配备电极参 数为0.01~0.1 cm-1的电导池,并具有温度自动补偿 功能。按照电导率仪说明书进行测量。 

1.4 可氧化物质 (1)制剂的制备。配置20%硫酸溶液,0.01 mol/L 高锰酸钾标准滴定溶液[7-8]。 (2)测定步骤。量取1000 ml纯化后水样,注入烧 杯中,加入5 ml硫酸溶液(20%),混匀。量取200 ml纯 化前水样,注入烧杯中,加入1 ml硫酸溶液(20%)混匀。 在上述已酸化的试液中分别加入1 ml高锰酸钾标准滴定 溶液[(C1/5 KMnO4)=0.01 mol/L]混匀,盖上表面皿,加 热至沸腾并保持5 min。

1.5 吸光度与蒸发残渣 采用紫外分光光度计,按照国家标准GB/T9721-2006“化学试剂分子吸收分光光度法通则“紫 外和可见光部分”的规定测定[9]。  量取1000 ml纯化后水样、纯化前水样500ml,分别 将水样分数次加入旋转蒸发器的蒸馏瓶中,于水浴上 减压蒸发。待水样最后蒸发至约50 ml时,停止加热。 将上述预浓集的水样,转移至一个已于(105±2)℃恒量 的蒸发皿中,并用5~10 ml水样分2~3次冲洗蒸馏瓶, 将洗液与预浓集水样合并与蒸发皿中,采用蒸发残渣 测定仪(ZF800A),按照国家标准GB/T 9740-2008化学 试剂蒸发残渣测定通用方法的规定进行测定[10]。 

1.6 可溶性硅 

1.6.1 制剂的准备 分别配置0.01 mg/ml,1 mg/ml的二氧化硅标准 溶液;50 g/l钼酸铵溶液;2 g/l对甲氨基酚硫酸盐溶 液;50 g/l草酸溶液。 

1.6.2 测定步骤 量取520 ml纯化后水样、纯化前水样270 ml,分别 注入铂皿中,亚沸蒸发至约20 ml,停止加热,冷却至室 温,加1ml钼酸铵溶液(50 g/l),摇匀,放置5 min后,加1 ml草酸溶液(50 g/l),摇匀,放置1 min后,加1 ml对甲氨 基酚硫酸盐溶液(2 g/l),摇匀。移入比色管中,稀释至25 ml,摇匀,于60℃水浴中保温10 min。溶液所呈蓝色不得 深于标准比色液。标准比色液的制备是量取0.5 ml二氧化 硅标准溶液(0.01 mg/ml),用水稀释至20 ml后,标准比色 液与检测的一级水和二级水同时采用同样的方法处理。 

1.7 统计学方法 采用SPSS 21.0统计分析软件进行数据处理。计 量资料以均值±标准差(x -±s)表示,组间差异分析采 用配对t检验,以P<0.05为差异有统计学意义。 

2  结果 

实验室净化前的纯水pH值为7.4±0.1,电导率为 (0.07±0.01)mS/m,可氧化物质含量为(0.07±0.02) mg/L,吸光度值为0.008±0.001,蒸发残渣含量为 (0.8±0.15)mg/L,可溶性硅含量为(0.015±0.003) mg/L;而经设备纯化后的纯水pH值为7.18±0.02, 电导率为(0.006±0.001)mS/m,可氧化物质含量为 (0.06±0.03)mg/L,吸光度值为0.001±0.000,蒸 发残渣含量为(0.6±0.08)mg/L,可溶性硅含量为 0.01±0.001。净化前后除可氧化物质含量外,pH值、电导率、吸光度、蒸发残渣含量及可溶性硅含量 进行统计学分析比较,差异有统计学意义(t=12.225, t=12.113,t=4.763,t=6.864,t=4.402;P<0.05), 可满足医用实验室的要求,见表1。 

3  讨论 

在本研究中,试验用纯水应用于西门子BN™ II全 自动蛋白分析仪和迈瑞BS380全自动生化分析仪检验 分析、试剂配液及容器清洗等,清洗反应杯及吸针。 若纯水质量不合要求,清洗过程水中杂质将留在反应 杯及吸针上,造成交叉污染[11-12]。纯水设备采用先进 的反渗透技术和离子交换等技术相结合的方式,微电 脑单板机程序控制,水质检测自动显示,从而获得了 高质量的产出水[13-14]。 纯水作为医院实验室用量最大的试剂,是许多物质 进行化学反应和能量交换的必要介质。水的纯度是否合 格将直接影响测量结果的可靠性,影响到临床的诊断和 治疗[15]。因此,必须对纯水质量引起高度重视,应意识 到纯水质量是获得其他检测准确结果的首要条件;并应 注意更新设备[16]。许多实验室纯水设备陈旧老化,所产 纯水不能满足标准要求,必须更新设备或改造程序。此 外,要加强制备、购进纯水过程中运输、保存与使用的 监控[17-18];如使用高压聚乙烯容器贮存电导率0.08 μs/ cm的纯水,两周后电导率会上升到0.1 μs/cm。纯水器 等实验室纯水系统的使用寿命与水质、日常维护有着紧 密的联系,水质差、日常不注意清洗维护会加重缩短纯 水器的使用期[18]。在纯水器的水箱及RO膜表面极易产 生菌膜,菌膜会使纯水器的运转出现问题,如造成滤膜 阻塞、内压升高、系统漏水及增压泵损坏;菌膜也造成 离子交换树脂无法正常工作;菌膜还会阻塞RO膜,使 其无法正常工作。应定期消毒RO膜,定期清洗水箱, 及时更换耗材,避免菌膜的产生并使纯水器达到最佳状 态,保持实验结果在无污染背景下的高一致性,为临床 的诊断和治疗提供准确的数据支持。

4  结语 参照国家标准GB/T 6682-2008“分析实验室用 水规格和试验方法”,分别从pH值、电导率、可氧化 物质、吸光度、蒸发残渣和可溶性硅的含量6个指标 探索分析实验室纯水在纯化前后的水质。结果表明, 实验室纯水净化前符合二级水质标准;而经设备纯化 后的纯水符合一级水质标准,实验室纯水净化后水质 得到显著提高,能够满足医用实验室的要求。



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